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專注于生物學試劑及試劑盒領域
服務熱線：18101056239
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產品型號：BC4250-50T/24S
更新時間：2024-04-15
廠商性質：生產廠家
訪 問 量 ：717
010-50973130
產品分類
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淀粉脫分支酶（DBE）活性檢測試劑盒說明書
可見分光光度法
注意：本產品試劑有所變動，請注意并嚴格按照該說明書操作。
貨號：BC4250
規格：50T/24S
產品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致，有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。
| 試劑名稱 | 規格 | 保存條件 |
| 提取液 | 液體50 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 試劑一 | 液體15 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 試劑二 | 粉劑×2瓶 | 2-8℃保存 |
| 試劑三 | 液體15 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 試劑四 | 液體42 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 標準品 | 粉劑×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制：
試劑二：臨用前取1瓶加入3 mL試劑一，充分溶解后待用，用不完的試劑2-8℃保存4周；
標準品：10 mg無水*萄糖。臨用前加入1 mL蒸餾水溶解，配成10 mg/mL葡萄糖溶液備用，2-8℃可保存兩周。
產品說明：
淀粉脫分支酶（starch debranching enzyme，DBE）能夠專一、高效的裂解支鏈淀粉的α-1,6-糖苷鍵，對淀粉的結構起“修飾"的作用，淀粉脫分支酶在調整支鏈淀粉側鏈的鏈長方面起著關鍵作用，淀粉分支酶和淀粉脫分支酶的平衡使得支鏈淀粉合成。
DBE催化支鏈淀粉產生還原糖，其與3,5-二硝基水楊酸反應生成棕紅色物質，通過測定其在540nm下吸光值變化可計算得DBE活性。
注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、臺式低溫離心機、水浴鍋或恒溫培養箱、1mL玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水、EP管。
操作步驟：
一、樣本處理（可適當調整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）
1、組織：按照組織質量（g）︰提取液體積（mL）為1︰5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液）進行冰浴勻漿，然后15000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
2、細胞或細菌：按照細胞或細菌數量（104個）︰提取液體積（mL）為500~1000︰1的比例（建議500萬個細胞或細菌加入1mL提取液），冰浴超聲波破碎細胞或細菌（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后15000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
3、液體：直接檢測。（若溶液有渾濁則離心后取上清測定）
二、測定步驟
分光光度計預熱30min以上，調節波長至540nm，蒸餾水調零。
將10mg/mL標準液用蒸餾水稀釋為0.5、0.4、0.3、0.2、0.1mg/mL的標準溶液備用。
| 序號 | 稀釋前濃度（mg/mL） | 標準液體積（µL） | 蒸餾水體積（µL） | 稀釋后濃度（mg/mL） |
| 1 | 10 | 100 | 1900 | 0.5 |
| 2 | 0.5 | 400 | 100 | 0.4 |
| 3 | 0.5 | 300 | 200 | 0.3 |
| 4 | 0.5 | 200 | 300 | 0.2 |
| 5 | 0.5 | 100 | 400 | 0.1 |
實驗中每個標準管需200µL標準溶液。
取250μL樣本沸水浴5min（蓋緊，防止水分散失），冷卻至室溫后，8000g，常溫離心5min，取上清備用。
操作表 (在1.5mL離心管中) ：
| 試劑名稱（µL） | 對照管 | 測定管 | 標準管 | 空白管 |
| 煮沸樣本 | 200 | - | - | - |
| 樣本 | - | 200 | - | - |
| 標準溶液 | - | - | 200 | - |
| 蒸餾水 | - | - | - | 200 |
| 試劑一 | 200 | - | 200 | 200 |
| 試劑二 | - | 200 | - | - |
| 混勻，37℃水浴或恒溫培養箱中準確反應2 h | ||||
| 試劑三 | 200 | 200 | 200 | 200 |
| 試劑四 | 600 | 600 | 600 | 600 |
| 混勻，沸水浴5min（蓋緊，防止水分散失），取出后立即冷卻至室溫，測定540nm處吸光值A，分別記為A對照管，A測定管，A標準管，A空白管。計算ΔA=A測定管-A對照管，ΔA標準=A標準管-A空白管。每個測定管需設一個對照管（標準曲線、空白管只需檢測1-2次）。 | ||||
注意：37℃水浴或恒溫培養箱中反應2h后，離心管底部可能有沉淀，無需離心，直接進入下一步試驗即可。
三、DBE活性計算
標準曲線的繪制：
以各個標準溶液的濃度為x軸，其對應的ΔA標準為y軸，繪制標準曲線，得到標準方程y=kx+b，將ΔA帶入方程得到x（mg/mL）。
DBE活性的計算：
（1）按蛋白濃度計算
酶活定義：每mg蛋白每小時分解支鏈淀粉產生1mg葡萄糖為1個酶活力單位。
DBE酶活（U/mg prot）=x×V提取÷（V提取×Cpr）÷T=0.5x÷Cpr
（2）按樣本質量計算
酶活定義：每g樣本每小時分解支鏈淀粉產生1mg葡萄糖為1個酶活力單位。
DBE酶活（U/g質量）=x×V提取÷W÷T=0.5x÷W
（3）按細胞或細菌數量計算
酶活定義：每104個細胞每小時分解支鏈淀粉產生1mg葡萄糖為1個酶活力單位。
DBE酶活（U/104 cell）=x×V提取÷細胞數量（萬個）÷T=0.5x÷細胞數量（萬個）
（4）按液體體積計算
酶活定義：每mL樣本每小時分解支鏈淀粉產生1mg葡萄糖為1個酶活力單位。
DBE酶活（U/mL）=x×V樣÷V樣÷T =0.5x
V提取：提取液體積，1mL；V樣：加入的樣本體積，0.2mL；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/mL，蛋白濃度自行測定；W：樣本質量，g；T：反應時間：2h。
注意事項：
A大于1時，建議將樣本用提取液稀釋后再進行測定。注意同步修改計算公式。
建議每次實驗沸水浴后冷卻時間保持一致。
實驗實例：
取0.1g大米，加入1mL提取液，進行冰浴勻漿，然后15000g，4℃，離心10 min，取上清置于冰上待測，取上清后再用提取液稀釋10倍，之后按照測定步驟操作，測得計算ΔA=A測定管-A對照管=0.390-0.125=0.265，標準曲線y=2.248x-0.1896，計算x=0.202，按樣本質量計算酶活得：
DBE酶活（U/g質量）=0.5x÷W×10（稀釋倍數）=10.1 U/g質量。
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