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當前位置:首頁產品中心生化檢測試劑盒-常量法谷胱甘肽系列BC6000-50T/24S谷*甘肽還原酶活性系數檢測試劑盒

谷*甘肽還原酶活性系數檢測試劑盒
產品簡介:

單位

中文名稱
谷*甘肽還原酶活性系數檢測試劑盒
有效期
6個月
儲存條件
-20℃
英文名稱
Glutathione Reductase Activation Coefficient Assay Kit
檢測方法
可見分光光度法
規格
50T/24S

產品型號:BC6000-50T/24S

更新時間:2024-04-24

廠商性質:生產廠家

訪 問 量 :1987

服務熱線

010-50973130

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產品介紹

谷*甘肽還原酶活性系數(GRAC)檢測試劑盒說明書

可見分光光度法

貨號:BC6000

規格:50T/24S

產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規格

保存條件

試劑一

液體40 mL×1瓶

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

2-8℃保存

試劑三A

粉劑×1

-20℃保存

試劑三B

液體1 mL×1支

2-8℃保存

試劑四

液體1.2 mL×1支

2-8℃保存

試劑五

粉劑×1

-20℃保存

試劑六

液體20 mL×1瓶

2-8℃保存

試劑七

液體50 mL×1瓶

2-8℃保存

溶液的配制:

1. 試劑二:臨用前加入1.2mL蒸餾水,充分溶解,2-8℃可保存4周;

2. 試劑三:臨用前取試劑三A加入0.537mL試劑三B,充分溶解,-20℃可分裝保存4周,避免反復凍融;

3. 工作液:臨用前根據樣本量按照試劑一:試劑二:試劑三:試劑四= 80μL:20μL:8μL:20μL128μL1T)的比例配制工作液,現用現配;

4. 試劑五:臨用前加入1.2mL蒸餾水,充分溶解,-20℃可分裝保存4周,避免反復凍融;

5. 試劑五工作液:臨用前根據樣本量按照試劑五:蒸餾水=5μL:95μL0.1mL5T)的比例配制,現用現配。

產品說明:

谷*甘肽還原酶(Glutathione Reductase,GR)是廣泛存在于真核與原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶,該酶以核黃素衍生物核黃素腺嘌呤二核苷酸(FAD)為輔基,催化NADPH還原氧化型谷*甘肽(G SSG)生成還原型谷*甘肽(GSH),維持巰基和膜蛋白處于還原狀態。當生物體內缺乏核黃素時,FAD含量相應減少,GR活性也隨之降低,谷*甘肽還原酶活性系數(GR Activation CoefficientGRAC)迅速升高,出現唇炎、口角炎、結膜炎等臨床癥狀。因此,GRAC用于核黃素營養狀況評價,對于早期發現缺乏病患者采取防治措施具有重要意義。

GR催化NADPH還原G SSG,生成GSHGSH55’-二硫代--2-*甲酸)(55’-dithiobis-2-nitrobenoic acidDTNB)反應產生2-硝基-5-*甲酸,2-硝基-5-*甲酸在波長412nm處有特征吸收峰,通過412nm處吸光度的變化可計算GR的活性。根據加入FAD前后GR活性的變化可計算得到GRAC

注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

 

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計、低溫離心機、分析天平、水浴鍋/恒溫培養箱、1mL玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟:

一、 樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

1. 組織樣本:按質量(g):試劑一體積(mL=15~10比例加入試劑一(建議稱取0.1g樣本,加入1.0mL試劑一),冰浴勻漿后,于4℃12000rpm離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。

2. 細胞樣本:按細胞數量(104):試劑一體積(mL)=500~10001的比例加入試劑一(建議500萬細胞加入1.0mL試劑一),冰浴超聲破碎細胞(功率200W,超聲3s,間隔7s,總時間3min),然后于4℃12000rpm離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。

3. 全血/紅細胞:建議取10μL全血/紅細胞,加入990μL試劑一,充分溶血混勻,于4℃,4000rpm離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。

4. 血清/血漿等液體樣本:直接測定。若有渾濁請離心后取上清置于冰上待測。

二、 測定步驟

1.可見分光光度計預熱30min以上,調節波長至412nm,蒸餾水調零。

2.將工作液37℃預熱10min

3.操作表:(在1.5mL EP管中加入下列試劑)

試劑名稱(μL

測定管

對照管

空白管

樣本

120

120

-

蒸餾水

-

20

120

工作液

128

128

128

試劑五工作液

20

-

20

混勻,37℃孵育30min

試劑六

320

320

320

混勻,4000rpm離心10min,取上清液于EP管中待測

上清液

240

240

240

試劑七

800

800

800

混勻,室溫靜置5min,取1mL反應液于1mL玻璃比色皿中,測定412處的吸光值,分別記為A測定、A對照、A空白。每個測定管需設置一個對照管,空白管只需測定1-2次。

三、GRAC活性計算

GRAC=(A測定-A空白)÷A對照-A空白)

注意事項:

1. 建議準備核黃素水平正常的樣本進行檢測,方便與核黃素缺乏的樣本進行比較;如果沒有核黃素水平正常的樣本,可參考一般核黃素水平正常的樣本GRAC為0.9-1.2

2. 如果樣本測定管吸光值大于1.5,建議將樣本用試劑一稀釋后進行測定;如果樣本測定管吸光值接近空白管,可適當增大樣本質量重新提取或提高加樣表中樣本體積,對照管、空白管蒸餾水需進行相應調整。

3. 樣本蛋白濃度需自行測定。由于提取液中含有一定濃度的蛋白(約0.11mg/mL),所以在測定樣本蛋白濃度時需要減去提取液本身的蛋白含量。

實驗實例:

1. 取0.1051g大鼠腎臟樣本,加入1mL試劑一進行冰浴勻漿,離心后取上清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得:A測定=0.482A對照=0.465A空白=0.084,計算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對照-A空白)= 1.045

2. 取10μL人紅細胞,加入990μL試劑一,充分溶血混勻,離心后取上清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得:A測定=0.530A對照=0.529A空白=0.084,計算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對照-A空白)= 1.002

3. 取馬血清樣本,直接按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得:A測定=0.453A對照=0.451A空白=0.084,計算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對照-A空白)= 1.005

參考文獻:

[1] Sauberlich H E, Judd J H, Nichoalds G E, et al. Application of the erythrocyte glutathione reductase assay in evaluating riboflavin nutritional status in a high school student population [J]. The American Journal of Clinical Nutrition, 1972, 25(8): 756-762.

[2] Gu CF, Chen YZ, Wang ZY. A study of the activation coefficients of blood glutathione reductase in the evaluation of experimental riboflavin deficiency [J]. Acta Nutrimenta Sinica, 1981, 3(4): 251-260.

[3] Ono S, Hirano H. FAD-induced in vitro activation of glutathione reductase in the lens of B2 deficient rats [J]. Current eye research, 1984, 3(4): 663-665.

[4] He J, Hu ML, H YM, et al. Study on the optimum conditions for determination of glutathione reductase activity coefficient in whole blood [J]. Chinese Journal of Public Health, 2002, 18(5): 615-616.

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